高分客户文章成功发表在Nature Plants、Cancer Research等知名期刊-辉骏生物

原理：双向电泳一次可以从细胞、组织或其它生物样本中分离上千种蛋白质，凝胶上的斑点都对应着样品中的蛋白质，且各种蛋白质的等电点，分子量和含量的信息都能通过质谱鉴定和软件分析获得。因此其在蛋白质组分析、疾病标志物检测、细胞差异分析、药物开发、癌症研究等领域都得到了广泛的应用。

Western blot实验中常常出现各种问题？辉骏生物为您解答以下几点主要困惑：1、内参怎么做？是在同一张膜上还是另外再跑一张膜来做？是不是与蛋白的分子量大小有关系呢？可以用同一张膜，转膜后先用目的蛋白的抗体做杂交，将抗体洗掉，再用内参抗体重新杂交，结果显示信号一致，就可以认为上样量一致。

在进行蛋白质组学研究时，有五大取样原则，其中“代表性”原则最为重要，取样的代表性关系到实验结果是否具有科学意义，因此在选择样品时应该根据研究目的慎重选择样品类型。经常有人吐槽血液、血浆、血清傻傻分不清楚，叶片、根茎不知如何选择？不要慌，辉骏生物向你介绍如何严谨选择样品。

普遍存在于各种生物的细胞核中的特殊形态的蛋白质，由核酸与组蛋白、精蛋白等的碱性蛋白结合而成为细胞核的主要成分。

Q：质谱仪常见的主要性能指标有哪些？A：1、质量范围（mass range）：指仪器所检测的离子的质荷比范围。2、分辨率（resolution）：指仪器分开相邻两离子质量的能力。3、灵敏度（sensitivity）：仪器出峰的强度与所用样品量之间的关系，即对选定的样品在满足一定分辨率下，产生一定信噪比的分子离子峰所需的样品量。

广州辉骏生物科技股份有限公司，以近10年的蛋白质组学服务经验，及完善的分生、细胞、互作分析等上下游实验平台，成功为50余篇SCI论文提供高品质核心数据。现隆重推出TMT三级质谱(MS3)定量技术服务！

因我司业务发展需要，自2019年9月19日起，将原公司“广州辉骏生物科技有限公司”变更登记为“广州辉骏生物科技股份有限公司”。因公司名称变更给您带来的不便敬请谅解，名称变更后的新公司将一如既往地为您提供优质服务。

病毒的滴度即每毫升溶液中含有的病毒感染单位(TU)。滴度值用于测定慢病毒所含有效感染单位的浓度。

外源基因进入细胞主要有四种方法：电击法、磷酸钙法和脂质体介导法和病毒介导法。电击法是在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入；磷酸钙法和脂质体法是利用不同的载体物质携带质粒通过直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因进入细胞；病毒法是利用包装了外源基因的病毒感染细胞的方法使得其进入细胞。但是由于电击法和磷酸钙法的实验条件控制较严、难度较大；病毒法的前期准备较复杂、而且可能对于细胞有较大影响；所以现在对于很多普通细胞系，一般的瞬时转染方法多采用脂质体法。

单链抗体（Single chain Fv，ScFv）是由一段弹性连接肽（Linker）把抗体可变区重链（VH）与轻链（VL）相连而成，是具有亲代抗体全部抗原结合特异性的最小功能结构单位，以分子量小（仅为完整抗体的1/6）、穿透力强、体内半衰期短、免疫源性低、可在原核细胞系统表达以及易于进行基因工程操作等特点而备受关注，近年来已在生物学、医学领域、实验室研究及疾病的诊治方面取得了长足的进展。但单链抗体常常又存在亲和力低、功能单一、稳定性较差、体内清除过快等不足，使它的广泛应用受到一定限制。因此，近年来在ScFv的基础上发展了结合性能良好的ScFv多聚体-Diabodies、Tribodies及Tetribodies等，这些多聚体之间的转换仅依赖Linker长度的变化，氨基酸从12个缩至0，则Diabodies转换为Tribodies，Tetribodies。这些多价、多效能、高亲和力的新型小分子抗体较单链抗体具有诸多优势，有关其制备及应用已进行了较深入的研究。

外泌体（exosomes）是细胞分泌的纳米级小泡，这些微囊泡的直径通常约30-150纳米，内部包含蛋白质、RNA等重要细胞分子。之前的研究表明，外泌体可作为癌症、神经退行性疾病、肾脏疾病的诊断标志。近几年外泌体的分离技术得到了明显的进步和发展，外泌体分离方法哪种好呢?下面各大方法详细介绍:

转染是将外源性基因导入细胞内的一种专门技术。分为物理介导方法：电穿孔法、显微注射和基因枪；化学介导方法：如经典的磷酸钙共沉淀法、脂质体转染方法、和多种阳离子物质介导的技术；生物介导方法：有较为原始的原生质体转染，和现在比较多见的各种病毒介导的转染技术。理想细胞转染方法，应该具有转染效率高、细胞毒性小等优点。病毒介导的转染技术，是目前转染效率最高的方法，同时具有细胞毒性很低的优势。但是病毒转染方法的准备程序复杂，常常对细胞类型有很强的选择性，在一般实验室中很难普及。其它物理和化学介导的转染方法，则各有其特点。需要指出的一点，无论采用哪种转染技术，要获得最优的转染结果，可能都需要对转染条件进行优化。影响转染效率的因素很多，从细胞类型、细胞培养条件和细胞生长状态到转染方法的操作细节。辉骏生物下面列举一些细胞转染6大影响因素

我们都知道，病毒缺乏复制机制，所以需要细胞来“存活”。慢病毒载体传递系统最重要的一个方面就是慢病毒载体的生产，通常在HEK293细胞(或一些变种)。

2018-2019两年，辉骏生物又喜提了多位合作老师们的高分文章，首先恭喜各位老师，同时也感谢公司各部门员工们的努力。从这几篇客户文章的情况来看，采用蛋白质、核酸相互作用的方法来筛选关键蛋白，研究其信号通路，是提升文章点数的一种很有效的方法。以往研究信号通路，很多老师习惯于套用类似样本的已有研究成果来做“复制型”研究，由于缺乏创新性，很难收获好的成果。现在，这类筛选型的研究方法，或许可以为您的科研之路打开新的大门。

样品制备是双向电泳中最关键的步骤，这一步处理的好坏将直接影响2-DE结果。但是目前来说，并没有一个比较标准或者通用的提取方法，不过基本来说，样品制备过程中都必须满足一些基本原则： 1）提高样品蛋白的溶解度，避免蛋白的丢失，使抽提的总蛋白具有代表性；这主要依靠蛋白溶解液的配方决定，可以采用高溶解能力的蛋白溶解液一次溶解，也可用采用不同溶解能力的蛋白溶解液分次溶解，同时增加溶解的时间同时结合其它一些手段比如超声溶解等可以达到较好的效果；

iTRAQ实验技术是比较蛋白质组学常用技术，iTRAQ能与肽N端及赖氨酸侧链发生共价连接而标记上肽段，本文通过iTRAQ实验技术比较头颈癌与非头颈癌组织蛋白质组的变化，通过iTRAQ试剂标记头颈癌样本和正常样本后进行LC-MS/MS分析，

大规模基因组测序计划的实施已改变生命科学的重心，在相当短的时期内，一些原核生物和某些低等真核生物的基因组序列已被测定。1995年，流感嗜血杆菌基因组序列首次被破译，在此后不到两年的时间，近50个细菌的基因组序列已被完成。然而，这仅仅是理解有机物功能的一个起点。在基因组时代，许多DNA序列信息仅提供相关基因组的结构和功能。然而，对基因产物（mRNA和蛋白质）的理解是理解细胞生物学的一个不可缺少的部分。DNA序列信息不能预测：1)基因表达产物是否或何时被翻译；2)基因产物的相应含量；3)翻译后修饰的程度；4)基因剔除或过表达的影响；5)遗留的小基因或<300 bp的ORFs的出现；6)多基因现象的表型。此外，mRNA水平的测量并不能完全揭示细胞调节；且蛋白质的样品较mRNA 稳定；蛋白质和mRNA之间的相关系数仅为0.4～0.5，还存在转录后加工、翻译调节以及翻译后加工等。故而，“基因组时代”的迅猛发展同时激起了人们对“后基因组时代”中蛋白质组研究的需求。

在一项新的研究中，来自奥地利科学院分子生物技术研究所的研究人员首次在培养皿中成功地培养出完美的人血管作为类器官（organoid）。这种突破性的工程技术极大地促进了糖尿病等血管疾病的研究，从而确定了一种潜在地阻止血管变化的关键途径，其中血管变化是糖尿病患者死亡和发病的主要原因。相关研究结果于2019年1月16日在线发表在Nature期刊上。

对于蛋白质组学的研究来说，它的最基本的实验手段就是利用双向凝胶电泳(two-dimensional protein electrophoresis, 2DE)，在整个 基因组水平上检测蛋白质表达的情况。双向凝胶电泳首先利用等电点聚焦来分离不同等电点的蛋白，再利用SDS－PAGE来分离不同分子量的蛋白，其分辨率是非常高的。微克级的蛋白质就可以被很好的分辨开了，如在微克级水平上，有人从一个蛋白混合物中最多分开了11200种蛋白质，数量是非常可观的。因而，微克级的蛋白的双向凝胶电泳常被用来初步检测表达或修饰有变化的蛋白。然后，同样的蛋白混合物样品可用于毫克级的2DE，这样，电泳图谱上的每一个多肽就可被纯化并进行下一步的分析，如质谱，末端或中间的氨基酸序列分析等。